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实验百宝箱-蛋白篇-酵母双杂

时间(jian):|作(zuo)者(zhe):

制备酵母感受态细胞并进行质(zhi)粒转化

    抽提BD和(he)AD的相关质粒(li)(浓度最(zui)好(hao)在μL);

    事(shi)先(xian)制备(bei)所(suo)需(xu)的培养(yang)基和平板;

   酵母(mu)感(gan)受(shou)态的(de)制备:

           将酵(jiao)母菌(jun)株(zhu)或(huo)者是(shi)其他的菌株)YPDA培(pei)养基平(ping)板(ban)上划(hua)线(xian),30℃倒(dao)置培养3天(tian)左右,直到克隆(long)大(da)小为(wei)

           挑取(qu)一(yi)个酵母克(ke)隆于7.5mlYPDA液体培养基中(50ml灭(mie)菌的离(li)心管),并且振荡转速(su)200rpm)培养24h左右;

           将这7.5ml将菌液(ye)注(zhu)入大容器(qi)中(具体容(rong)量(liang)由转换(huan)个(ge)数(shu)决定(ding)))YPDA液体培养基中6h左右(you),30℃  200rpm 振(zhen)荡培养;

           室(shi)温4000rpm离心(xin)5min收(shou)集菌体(ti),排(pai)除上(shang)清(qing)并采(cai)用(yong)40ml无(wu)菌去(qu)离子水(shui)重悬(xuan)酵母;

           室温(wen)4000rpm离心5min收集(ji)菌体,排除(chu)上清并采用3ml 1.1×TE/LiAc溶液重悬酵母;

           将重悬液分装(zhuang)为21.5ml的离心管,4000rpm离心

           把(ba)上清倒掉(diao),然后把酵母重(zhong)新(xin)悬浮(fu)于其(qi)中600ul1.1×TE/LiAc溶液

           在一个1.5ml将(jiang)以(yi)下成(cheng)分加入(ru)干(gan)净的离心管(guan)中(zhong),并进(jin)行灭菌处(chu)理(li)

10ul herring testes carrier DNA (使用前(qian)在(zai)°C水浴(yu)锅(guo)中变形(xing)10分钟,立即放在冰(bing)上,以后(hou)使(shi)用,就(jiu)不(bu)需要(yao)变(bian)性),具体设(she)置的实验(yan)如(ru)下:

实验组(zu)

阴(yin)性(xing)对照1

阴性对照(zhao)2

用量

1

BK-bait

pGBKT7

BK-bait

0.2ug

2

AD-prey

AD-prey

pGADT7

0.1ug

 9) 100ul 感受态细胞(bao)加入到DNA中;

10)加(jia)入600ul PEG/LiAc solution 快(kuai)速彻(che)底(di)的混(hun)匀(yun);

11) 放(fang)置(zhi)于30℃并(bing)且振荡转(zhuan)速200rpm)培养30分钟(zhong);

12) 每(mei)管加入70μl DMSO,轻(qing)轻上下颠(dian)倒混匀,42℃水浴热(re)激15分(fen)钟;

13) 冰浴2分钟, 4000rpm2将菌体离心收集,上清液倾倒;

14)500ul TEPH 8.00)重悬菌体,离心4000rpm2分钟离心收集菌体,舍(she)弃(qi)上清液,最后使用50ul TE重悬菌体涂(tu)布(bu)于相应(ying)的SD-Trp/-Leu固(gu)体平板上,30℃ 倒置培养 3大约(yue)需要天的时(shi)间,直到(dao)长出(chu)所需大小(xiao)的克隆;

15)平板上选(xuan)择(ze)合适(shi)尺(chi)寸(cun)的克隆进行挑(tiao)选,并在其上操(cao)作700ulSD-Trp/-Leu液体培养基(ji)中30震荡(dang)过夜(ye)培养,然(ran)后按1:10,1:100,1:1000的稀(xi)释(shi)比(bi)转移(yi)到及(ji)SD-Trp/-Leu/-His/-Ade固体培养基上培养,大约2大约一天左(zuo)右,就能(neng)观(guan)察(cha)到菌落(luo)的生长(zhang)情(qing)况(kuang)

16)对(dui)于在或者是SD-Trp/-Leu/-His/-Ade培养基上有良好的生长,而(er)阴性对照没(mei)有(you)生(sheng)长的平板可被(bei)保(bao)存(cun)拍(pai)照记(ji)录(lu)(若有由(you)于His渗(shen)漏(lou)表(biao)达(da)造(zao)成的背(bei)景(jing)杂(za)菌,可在培养基中加入1mM  3-AT进行(xing)抑(yi)制)。

酵母相(xiang)关试(shi)剂的配(pei)制:

   YPD培养基(1L

PEPTONE                 20g

Yeast extract               10g

ddH2O 溶解后,定容至1L,并用KOHPH至(zhi)5.80,(若(ruo)为固体加入Agar  20g)高(gao)压(ya)灭菌,如果需要放置平板,则(ze)在稍(shao)冷(leng)却(que)后加入40%的葡(pu)萄(tao)糖溶(rong)液(终浓度(du)2%)。

2.     YPDA培养基(1L

1L YPD液体培养基中加入15ml 0.2Adenine hemisulfate 溶液(终(zhong)浓(nong)度为0.03%)

3.     SD-Trp/-LeuSD-Trp/-Leu/-His培养基的配置(1L

Minimal SD baseClontech    26.7g

SD--Trp/-Leu    0.64gSD-Trp/-Leu/-His/-Ade   0.60g

加水溶解并定容至1L,并且(qie)调5.80若为固体培养基则加入20g Agar(终浓度2%),并高压灭菌(灭菌15min

4.      1.1 ×TE/LiAc

现(xian)配现用:1.1ml  10×TE1.1ml 1M  LiAc ,用无菌去离子(zi)水补充(chong)至10ml

5.      PEG/ LiAc

现配现用:1ml  10×TE1ml 1M  LiAc ,然后用50 PEG3350 溶液补至10ml

 

注意(yi)问(wen)题:

做(zuo)酵母时,1.1 ×PEG/ LiAc混合(he)溶液必须(xu)即(ji)兴(xing)配制(zhi)和使用;

当(dang)目(mu)的蛋(dan)白在如果酵母感受态(tai)的浓度较(jiao)低(di),可(ke)以考(kao)虑(lv)提(ti)高其量;

在加入切(qie)勿(wu)剧(ju)烈(lie)震(zhen)动(dong),以免(mian)影(ying)响(xiang)感受态的效(xiao)率(lv);

所有步骤(zhou)均(jun)在无菌台上进行,以防(fang)止(zhi)其他(ta)杂菌污(wu)染(ran);

SD-Trp/-Leu/-His SD-Trp/-Leu/-His/-Ade 加水溶解(jie)并定容至1L,并且调(diao)pH5.80,务(wu)必(bi)要调节(jie)pH,否则,如果涂抹(mo)培养基时遇(yu)到很松(song)软(ruan)的情况,会(hui)导(dao)致(zhi)培养基破(po)裂(lie)成碎(sui)渣,从(cong)而延(yan)误(wu)实(shi)验进程(cheng);

解决(jue)自(zi)激(ji)活(huo)问题(ti)的方(fang)法(fa)如下所述(shu):

加入一定浓度的3AT(如1mM);

如果目的蛋白(bai)在AD上有自激活,就换到BD那(na)一边(bian);

) 可以放在25°C培养;

)如果无法解决问题,考虑减少(shao)目标(biao)蛋白的长度。

 

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